An efficient protocol to generate placental chorionic plate-derived mesenchymal stem cells with superior proliferative and immunomodulatory properties

--间充质干细胞（MSCs）由于高度自我更新和多向分化能力、低免疫原性和免疫调节等特性，在临床应用中具有巨大潜力。

--骨髓是传统的MSCs来源，但由于骨髓中细胞数量少、采集过程具有侵入性，且增殖能力随年龄增长而降低，因此骨髓并不是MSCs的理想来源。

--然而，临床试验中对MSCs日益增长的需求使得高质量、大批量的MSCs成为必要条件，有必要为临床应用寻找替代的MSCs来源。

 --围产期组织如胎盘和脐带是极具潜力的MSCs来源，具有易于获取、采集过程无创和伦理约束最小等优点。

--与从成人骨髓或脂肪组织中衍生的MSCs相比，胎盘衍生的间充质干细胞（P-MSCs）和脐带衍生的间充质干细胞（UC-MSCs）通常被认为是具有更强增殖能力、免疫调节能力和更低免疫原性的细胞。

--研究发现，P-MSCs在免疫调节特性方面优于UC-MSCs。因此，胎盘似乎是获取MSCs的更好选择。目前已经从胎盘的不同解剖区域中成功分离出各种P-MSCs，包括绒毛膜板衍生的MSCs（CP-MSCs）、绒毛膜绒毛衍生的MSCs（CV-MSCs）、羊膜衍生的MSCs（AM-MSCs）和蜕膜衍生的MSCs（D-MSCs）。

--目前分离P-MSCs的主要方法是酶解法和外植体培养（EC）法。在酶解法中，组织块被蛋白酶消化，获得的细胞悬液进行培养。然而，酶解法会影响MSCs的生物特性，如增殖能力，并由于消化时间过长而降低细胞活力。虽然通过EC获得的MSCs具有更好的生物学功能，但由于细胞从组织块中迁移较慢，因此达到细胞汇合所需的时间更长。

--通过结合初始的温和酶解反应和随后的外植体培养，开发改良的外植体培养（MEC）方法，在无血清培养基中同时从不同胎盘区域产生多种P-MSCs。将其分离效率、细胞产量和增殖能力与传统的外植体培养（EC）方法进行比较、并确定用于组织收获的部位是否会影响P-MSCs的功能特性，包括其增殖、迁移能力以及对巨噬细胞的免疫调节作用。

--与传统方法相比，MEC方法在无血清培养基中实现了更高的产量和更短的原代细胞汇合时间。

--收获的细胞具有MSCs特性，并显示出显著增强的增殖能力。

--源自绒毛膜板（CP-MSCs）的MSCs在增殖和迁移能力方面优于其他P-MSCs，并且在连续传代过程中保持了胎儿起源的特性，在调节巨噬细胞从M1向M2极化方面表现出更强的能力。

本研究开发了一种高效、高产的P-MSCs培养技术，并证实了CP-MSCs的优异特性，为P-MSCs的临床应用提供了新的技术支持和理论基础。